Дмитрий Самарин – Подледная ловля рыбы читать онлайн
12 3 4 5 6 7 …21
Дмитрий Самарин
Подледная ловля рыбы
ВОДОЁМЫ ЗИМОЙ
Осеннее похолодание вносит большие изменения в жизнь водоёма. Снижается температура воздуха, вода становится холоднее, чище и плотнее. Опускаются на дно водоросли, замирает планктон, места летних стоянок рыбы около прибрежной растительности пустеют: рыба постепенно уходит в более глубокие места с установившейся ровной температурой — примерно +4°. Верхний слой воды продолжает охлаждаться и при первом морозе, если нет сильного ветра, превращается в ледяную корку, нарастающую изнутри под действием холода. Водоём покрывается льдом, значительно сокращается доступ кислорода в толщу воды.
Изменение кислородного режима и низкая температура оказывают огромное влияние на жизнь рыб. Реакции в их организме замедляются, медленнее переваривается пища, сокращается потребность в ней. Меняется поведение рыб — они становятся вялыми, некоторые из них (линь, карась, сом, сазан, карп) впадают в зимнюю спячку.
При сильном понижении температуры воздуха рыбы становятся ещё более вялыми: часто стоят на одном месте и в отдельные периоды почти не кормятся (активную жизнедеятельность в течение всей зимы обнаруживает только налим). Такие рыбы реже идут на приманку и меньше сопротивляются, когда их вытаскивают из воды.
При ловле поплавочными удочками и на мормышку поклёвки голавля, окуня, язя передаются едва заметным смещением поплавка или ослаблением лесы. Даже прожорливая щука, схватив живца, зачастую долго стоит с ним на одном месте, как бы собираясь с силами, чтобы его проглотить.
Килограммовый окунь, способный летом оборвать добротную лесу и запутать все поставленные рядом удочки, зимой становится значительно покорнее и сравнительно спокойно идёт в лунку.
При понижении температуры воздуха и воды рыбы стаями собираются к местам своих зимних стоянок, наиболее благоприятным по температуре, кислородному режиму и наличию корма. Эти привычные места они покидают только вследствие резких изменений обстановки (подъем или спад воды, сильные морозы или оттепели).
Окуни ловятся на пологой, неглубокой и чистой песчаной отмели, а также на дне глубоких ям. Плотва предпочитает глубокие места в реках с медленным течением; часто она держится в русле или около него, среди затопленного коряжника, а на мелкие места к берегам выходит в оттепели. Вместе с ельцом и голавлем плотва встречается в устьях небольших речушек и ручьёв. На исходе зимы плотва подходит к берегам, привлечённая притоком талой воды, и жадно хватает мормышку на самых мелких местах.
Лещ и густера придерживаются глубоких мест (5-7 м) со слабым течением и гладким песчаным или галечным дном. В небольших и неглубоких речках они держатся в русле, на широких плёсах.
Голавля в реках можно обнаружить на каменистом или песчаном дне у затопленных береговых кустов, возле островков, в омутах вблизи сильной струи или на песчаных косах за островами. Наиболее удачно он ловится в марте и по последнему льду.
Вместе с плотвой, лещом и густерой изредка ловится язь у берегов с обрывистыми скатами, в коряжнике, по ямам в устье речушек и ручьёв, в озёрах — среди прошлогодней водной растительности, на небольшой глубине.
Обычно рыба избегает стоянок на быстром течении.
Для успешной ловли зимой рыболов должен заблаговременно изучить водоём, собрать сведения о зимних стоянках рыбы, найти эти места. Следует помнить, что поиски рыбьих стоянок зимой, особенно во второй половине, затрудняются толстым льдом, поэтому разумнее проводить их в первый месяц ледостава.
Правильный выбор места очень часто определяет успех ловли.
Наилучшие часы зимнего клёва — ранние, утренние и вечерние. Кратковременно оживляется клёв в середине дня, около двух часов. В первые две недели зимнего ледостава и за две-три недели перед вскрытием льда рыба хорошо ловится в течение всего дня. На исходе первого месяца после ледостава клёв резко снижается, становится неровным. В январе и первой половине февраля в отдельные дни в некоторых водоёмах рыба вообще не клюёт. С приближением весны клёв снова оживляется с интенсивным нарастанием до «жора».
Чем «глуше» сезон ловли, тем большее значение приобретают прикормка (при ловле поплавочными удочками), тонкое оснащение удочек, применение разнообразных приёмов ловли и, разумеется, знание водоёмов.
Опытные рыболовы, в совершенстве знающие зимнюю ловлю и отлично изучившие водоёмы, не признают «глухих» периодов подлёдной ловли.
Благоприятствуют клёву рыбы устойчивая погода в течение длительного периода, оттепель после морозов, затишье после метели, весенний подъем льда, появление проталин и закраин, медленный спад воды. И, наоборот, резко меняющаяся температура, метели, порывистые сильные северные и восточные ветры, снегопады, весенние дожди, быстрый спад воды значительно снижают интенсивность клёва.
В небольших малопроточных водоёмах к концу зимы количество содержащегося в воде кислорода, поглощаемого остатками растений и животных организмов, настолько сокращается, что его не хватает для нормальной жизнедеятельности рыбы. В этом случае рыба подымается под самый лёд в поисках свежего воздуха и, не найдя его, погибает. Такое явление называется замором. Бороться с ним можно, устраивая проруби и перекачивая воду мотопомпой или ручным насосом из одной проруби в другую по вырубленным во льду канавкам.
С началом весеннего таяния снега жизнь водоёма активизируется. Первые струйки богатой кислородом талой воды все больше и больше просачиваются под лёд. Рыбы подходят к таким местам, собираются большими стаями, клёв постепенно усиливается и не прекращается до тех пор, пока не помутнеет вода и не вскроется водоём.
Особенно интересен для рыболова весенний подъем льда. Постепенно освобождаясь под действием солнечных лучей и вешних вод от берегового припоя, ледяное поле окончательно отрывается от берегов и всплывает. Остатки мокрого снега, смешанного с водой, быстро сходят с его поверхности; она становится сухой и ровной, очень удобной для передвижения.
В первые дни после подъёма льда выбор места для выхода на водоём не представляет затруднений: край льда находится ещё рядом с берегом. Но солнце и вода делают своё дело, и ширина закраин постепенно увеличивается. Чтобы выбраться на лёд, приходится искать места, меньше подверженные действию солнца. Выходя утром при лёгком морозе на лёд, следует помнить, что за долгий весенний день обстановка к вечеру может резко измениться и вернуться на берег в этом месте будет невозможно.
Значит, нельзя выходить на лёд без лодки, плота, жерди или мостков из досок.
Читать дальше
12 3 4 5 6 7 …21
Читать онлайн “Подледная ловля рыбы” – Самарин Дмитрий Алексеевич – RuLit
Хорошо пользоваться личинками, припудренными картофельной мукой. Такие личинки не слипаются, что значительно упрощает их насадку на крючок.
Больше четырех личинок на небольшой крючок насаживать не следует: они будут мешать подсечке. В периоды слабого клёва рыбы можно надевать одну личинку, скрывая жало крючка в её тёмной головке или нанизывая «колечком» (рис, 9).
Рис. 9. Способы насадки мотыля
Рыба обычно всасывает мотыля в полость рта вместе с крючком, выдавливает содержимое личинок и выталкивает обратно белесые остатки кожицы.
Рыболовы называют такой вид поклёвки «обсасыванием» и в поисках мест стоянки рыбы расставляют запасные удочки в разных местах водоёма.
Реже рыба срывает личинки с крючка или проглатывает их вместе с крючком. Такие поклёвки бывают лишь у ерша и мелкого окуня, которые отличаются особой прожорливостью.
Если есть мотыль, то не рекомендуется применять другие насадки — червей, хлеб, сало и т. д. (за исключением малька): все они необычны зимой и привлекают рыбу только в редкие периоды «жора».
Прикармливая рыбу на течении, следует заложить в мотыльницу вместе с мотылём немного песка, размельчённого ила или земли. Уносимые течением частички грунта образуют около дна мутную струйку с плывущим в ней мотылём. А это приманивает и мелкую и крупную рыбу.
Большое значение имеет подготовка места ловли. Прорубленную лунку нужно с помощью черпака-выгребалки очистить от плавающего в ней размельчённого льда. Верхний и нижний края лунки не должны иметь выступов, за которые могла бы цепляться леса. При ловле на течении дальнюю от рыболова часть нижнего края лунки обычно обрубают, чтобы избежать перегибов лесы, понижающих чувствительность поплавка.
Наиболее удобная форма лунки в толстом льду — конусообразная, с небольшим расширением к верхнему краю. Диаметр нижнего отверстия — 12-15 см. Чем толще лёд, тем шире приходится делать верхнее отверстие лунки.
Лунка прорубается сравнительно легко и быстро, если углублять её равномерно по всей площади. В противном случае рано пробившаяся вода затруднит дальнейшую работу.
Ледобуры значительно упрощают и облегчают эту работу.
Если ловят одновременно на две-четыре удочки, их размещают в лунках на расстоянии 15-20 см друг от друга на одной линии, находящейся под прямым углом к течению.
Образующуюся на поверхности лунки ледяную корочку удаляют черпаком, следя за тем, чтобы леса не вмерзала в лёд.
На всё время ловли можно сохранить рыбу живой. Для этого во льду около лунки вырубают «аквариум» (корытце) длиной 50-60 см, шириной и глубиной 15 — 20 см. Его соединяют с лункой канавкой, и после заполнения «аквариума» водой канавку закладывают снегом или мелким льдом.
При ловле в отвес, подготовив лунки и опустив прикормку, определяют глубину. Глубомер на крючке опускают на дно и передвигают поплавок по натянутой лесе до уровня воды. Затем, выбрав из воды лесу, снимают с крючка глубомер, надевают насадку и погружают её в воду. Чтобы насадка находилась на определённом расстоянии ото дна, поплавок передвигают по направлению к крючку, подматывают излишек лесы, закрепляют её на вершине удилища и опускают поплавок в лунку. Если поклевок долго нет, насадку поднимают или опускают, облавливая разные глубины.
Поклёвка рыбы обозначается или лёгким нажимом поплавка, или небольшим смещением его в сторону. И в том, и в другом случае должна последовать быстрая подсечка. Мелкое, частое подёргивание поплавка обычно вызывается поклёвкой рыбьей мелочи.
При ловле с поплавком, высовывающимся из воды (в неморозные дни), поклёвки зачастую проявляются чуть заметным погружением его вершины.
Подсекать надо немедленно. Необходимо время от времени спокойно поднимать удилище, подтягивать насадку вверх до одного метра, подсекать и, если нет рыбы, опускать крючок на прежнее место. При поклёвке, выраженной лёгким толчком или отклонением лесы в сторону, подсечку надо делать быстрым, коротким движением удилища вверх. Этот способ называют ловлей на «потяжку». Для более точного определения поклёвки при ловле на «потяжку» можно применять дополнительное приспособление к удочке, именуемое «сторожок» или «кивок».
При ловле со дна после подготовки лунок и запуска прикормки на крючок надевают насадку и опускают её на дно, закрепляя в нужном месте поплавок.
Если ловля ведётся на течении, надо проверить, соответствуют ли размеры грузила и поплавка силе течения. Чрезмерно лёгкое грузило будет уноситься течением вперёд и подниматься ото дна вместе с насадкой, а очень мелкий поплавок не выдержит напряжения лесы от силы течения и уйдёт под лёд.
Поплавок опускают в лунку к дальнему от рыболова краю и лёгким движением удилища подтягивают к ближнему краю.
Благодаря этому увеличивается чувствительность поплавка на натянутой лесе.
Подсечка делается, как и при ловле в отвес, в момент лёгкого нажима поплавка. На сильном течении рекомендуется делать её при малейшем движении поплавка. В любых условиях неплохо применять способ ловли на «потяжку».
Подсечённую рыбу, если она невелика, быстро вытаскивают на лёд, широкими движениями вытягивая лесу. При поимке крупной рыбы добычу вываживают с помощью гибкого конца удилища, не захватывая лесу пальцами, но оттягивая в сторону-вверх выбранную часть лесы наружной стороной кисти свободной руки. Затем под вытянутую часть лесы подводится тонкий конец удилища. Так, поочерёдно наматывая лесу кругами на кисть и тонкий конец удилища, выбирают всю лесу и подводят к лунке подсечённую рыбу. При сильной потяжке рыбы можно сбросить с конца удилища и кисти один-два круга выбранной лесы.
Опытные рыболовы, обладающие достаточной выдержкой, с успехом применяют иной способ, особенно удобный при ловле на больших глубинах.
После подсечки первые порывы крупной рыбы преодолевают с помощью тонкого конца удилища, для чего встают с места, стараются поднять удилище возможно выше вытянутой вверх рукой и заставляют рыбу подниматься со дна. Подняв удилище до предела, свободной рукой берутся за лесу и пропускают её между большим и указательным пальцами. Лесу держат напряжённо, не подтягивая к себе. Крупные рыбы идут вверх тяжело, рыболовы ощущают короткие мощные толчки. После каждого толчка леса немного ослабевает, её немедленно выбирают, но не тянут рыбу до следующего толчка и нового ослабления лесы. Выбрав лесу на высоту поднятой руки, её тем же способом перехватывают во вторую руку и продолжают медленное вываживание.
Искусство борьбы с рыбой заключается в постоянной готовности рыболова выбрать небольшую часть ослабленной лесы и отпустить её при резком рывке рыбы. Очень внимательно надо следить за поведением рыбы в тот момент, когда она окажется в непосредственной близости от нижнего края лунки и, испугавшись света, бросится в сторону.
Чтобы спасти лесу и удержать рыбу, приходится иной раз отдавать два-три метра лесы. Разумеется, решающее значение в таком случае имеет выдержка рыболова: излишняя торопливость почти всегда приводит к плачевному результату. Подведённую к лунке крупную рыбу вытаскивают на лёд багориком. Вываживание крупной рыбы на течении требует особой осторожности и внимания, так как её сопротивление увеличивается за счёт силы течения.
Возможное участие окислительного стресса в процессе старения ооцитов у золотой рыбки Carassius auratus (Linnaeus, 1758)
1. Liang X, Ma J, Schatten H, Sun Q. Эпигенетические изменения, связанные со старением ооцитов. науч. Китай. Жизнь. науч. 2012;55(8):670–676. doi: 10.1007/s11427-012-4354-3. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
2. Ланштайнер Ф., Урбани Б., Хорват А., Вейсманн Т. Биомаркеры для определения качества яиц у карповых рыб. Аквакультура. 2001; 195:331–352. doi: 10.
1016/S0044-8486(00)00550-0. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]
3. Самарин А.М. и соавт. Влияние постовуляторного старения ооцитов и температуры на качество яиц кутума Rutilus frisii kutum. Мир. заявл. науч. Дж. 2011;15(1):14–18. [Google Scholar]
4. Flajshans M, Kohlmann K, Rab P. Автотриплоидные личинки линя Tinca tinca (L.), полученные путем оплодотворения яиц, предварительно подвергнутых постовуляторному старению in vitro и in vivo . Дж. Фиш Биол. 2007; 71: 868–876. doi: 10.1111/j.1095-8649.2007.01557.x. [Перекрестная ссылка] [Академия Google]
5. Эгертер С., Джалаберт Б. Влияние старения ооцитов после овуляции и температуры на качество яиц и появление триплоидных мальков у радужной форели Oncorhynchus mykiss. Аквакультура. 2004; 231:59–71. doi: 10.1016/j.aquaculture.2003.08.019. [CrossRef] [Google Scholar]
6. Bonnet E, Fostier A, Bobe J. Характеристика качества яиц радужной форели: тематическое исследование с использованием четырех различных протоколов разведения с акцентом на частоту возникновения эмбриональных пороков развития.
Териогенология. 2007; 67: 786–79.4. doi: 10.1016/j.theriogenology.2006.10.008. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
7. Самарин А.М. и соавт. Хранение in vitro неоплодотворенной икры евразийского окуня и его влияние на показатели жизнеспособности икры и возникновение пороков развития личинок. Животное. 2017;11(1):78–83. doi: 10.1017/S1751731116001361. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
8. Tarin JJ, Perez-Albala S, Perez-Hoyos P, Cano A. Постовуляторное старение ооцитов снижает репродуктивную способность и продолжительность жизни потомства. биол. Воспр. 2002;66:495–499. doi: 10.1095/biolreprod66.2.495. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
9. Liang XW, et al. Влияние постовуляторного старения ооцитов мышей на метилирование и экспрессию импринтированных генов на среднем сроке беременности. Мол. Гум. Воспр. 2011; 17: 562–567. doi: 10.1093/molhr/gar018. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
10. Liang XW, et al. Потеря импринта метилирования Snrpn в постовуляторных стареющих ооцитах мышей.
Биохим. Биофиз. Рез. коммун. 2008; 371:16–21. doi: 10.1016/j.bbrc.2008.03.105. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
11. Минами Н., Сузуки Т., Цукамото С. Активация зиготических генов и материнские факторы у млекопитающих. Дж. Репрод. Дев. 2007; 53: 707–715. doi: 10.1262/jrd.19029. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
12. Йошида Н., Брахмаджисула М., Сёдзи С., Аманай М., Перри А.С. Эпигенетическая дискриминация ооцитами метафазы II мыши опосредует асимметричное ремоделирование хроматина независимо от выхода из мейоза. Дев. биол. 2007; 301:464–477. doi: 10.1016/j.ydbio.2006.08.006. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
13. Самарин А.М., Поликар Т., Ланштайнер Ф. Старение ооцитов рыб и его влияние на качество яиц. Преподобный Рыба. науч. Аква. 2015; 23:302–314. doi: 10.1080/23308249.2015.1053560. [CrossRef] [Google Scholar]
14. Зуккотти М., Мерико В., Чеккони С., Реди К.А., Гаранья С. Что нужно для создания яйца млекопитающего, способного к развитию? Гум.
Воспр. Обновлять. 2011;17:525–540. doi: 10.1093/humupd/dmr009. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
15. Bonnet E, Fostier A, Bobe J. Анализ качества рыбьей икры после естественной или контролируемой овуляции на основе микрочипов. Геномика BMC. 2007; 8:55. дои: 10.1186/1471-2164-8-55. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
16. Aegerter S, Jalabert B, Bobe J. MessengerRNA запас циклина B, инсулиноподобного фактора роста I, инсулиноподобного фактора роста II, рецептора инсулиноподобного фактора роста Ib и p53 в ооцитах радужной форели в связи с развитием. . Мол. Воспр. Дев. 2004; 67: 127–135. doi: 10.1002/mrd.10384. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
17. Эгертер С., Джалаберт Б., Боб Дж. Крупномасштабный ПЦР-анализ в реальном времени содержания мРНК в икре радужной форели в связи с качеством яиц и постовуляторным старением. Мол. Воспр. Дев. 2005; 72: 377–385. doi: 10.1002/mrd.20361. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
18. Mommens M, et al.
Экспрессия материнского гена у атлантического палтуса (Hippoglossus hippoglossus L.) и ее связь с качеством яиц. Примечания BMC Res. 2010;3:138. дои: 10.1186/1756-0500-3-138. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
19. Ma H, et al. Профили экспрессии микроРНК из яиц различного качества, связанные с постовуляционным старением у радужной форели (Oncorhynchus mykiss) BMC Genomics. 2015;16:201. doi: 10.1186/s12864-015-1400-0. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
20. Лорд Т., Никсон Б., Джонс К.Т., Эйткен Р.Дж. Мелатонин предотвращает постовуляторное старение ооцитов у мышей и расширяет окно для оптимального оплодотворения in vitro . биол. Воспр. 2013;88:1–9. doi: 10.1095/biolreprod.112.106450. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
21. Lord T, Aitken RJ. Окислительный стресс и старение постовуляторных ооцитов. Репродукция. 2013; 146: 217–227. doi: 10.1530/REP-13-0111. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
22.
Takahashi T, Takahashi E, Igarashi H, Tezuka N, Kurachi H. Влияние окислительного стресса в ооцитах старых мышей на колебания кальция при оплодотворении. Мол. Воспр. Дев. 2003; 66: 143–152. doi: 10.1002/mrd.10341. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
23. Tarin JJ, Perez-Albala S, Cano A. Последствия аномальной функции стареющих гамет для потомства. Гум. Воспр. Обновлять. 2000; 6: 532–549. doi: 10.1093/humupd/6.6.532. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
24. Самарин А.М. и соавт. Изменения содержания мРНК в течение in vitro старения ооцитов у африканского сома Clarias gariepinus (Burchell, 1822) Aquac. Рез. 2018;49:1037–1045. doi: 10.1111/are.13552. [CrossRef] [Google Scholar]
25. Kikuchi K, Naito K, Noguchi J, Kaneko H, Tojo H. Фактор, стимулирующий созревание/M-фазу, регулирует старение созревших ооцитов свиньи in vitro . Клонирование стволовых клеток. 2002; 4: 211–222. doi: 10.1089/15362300260339494. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
26.
Formacion MJ, Venkatesh B, Tan CH, Lam TJ. Перезревание овулировавшей икры золотых рыбок Carassius auratus: II. Возможное участие постовуляторных фолликулов и стероидов. Рыбная физиол. Биохим. 1995;14(3):237–246. doi: 10.1007/BF00004314. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
27. Grondahl ML, et al. Профили экспрессии генов отдельных зрелых ооцитов человека в зависимости от возраста. Гум. Воспр. 2010;25(4):957–68. doi: 10.1093/humrep/deq014. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
28. Steuerwald NM, Bermudez MG, Wells D, Munne S, Cohen J. Возрастные дифференциальные профили глобальной экспрессии матери, наблюдаемые в ооцитах человека. Воспр. Биомед. В сети. 2007; 14: 700–708. doi: 10.1016/S1472-6483(10)60671-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
29. Pan H, O’Brien MJ, Wigglesworth K, Eppig JJ, Schultz RM. Профилирование транскриптов во время развития ооцитов мыши и влияние гонадотропного праймирования и развития in vitro . Дев. биол. 2005; 286: 493–506.
doi: 10.1016/j.ydbio.2005.08.023. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
30. Hamatani T, et al. Связанное с возрастом изменение паттернов экспрессии генов в ооцитах мышей. Гум. Мол. Жене. 2004;13(19):2263–2278. doi: 10.1093/hmg/ddh341. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
31. Esponda, P. & Dıaz, H. Возрастной апоптоз и активация белка теплового шока HSP70 в ооцитах млекопитающих. Сигнализация и апоптоз , PP-184a (2006).
32. Вербеке П., Фонагер Дж., Кларк Б.Ф., Раттан С.И. Реакция на тепловой шок и старение: механизмы и приложения. Клеточная биол. Междунар. 2001; 25: 845–857. doi: 10.1006/cbir.2001.0789. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
33. Sturtz LA, Diekert K, Jensen LT, Lill R, Culotta VC. Фракция дрожжевой супероксиддисмутазы Cu, Zn и ее металлошаперона, CCS, локализуется в межмембранном пространстве митохондрий: физиологическая роль SOD1 в защите митохондрий от окислительного повреждения. Дж. Биол. хим. 2001; 276:38084–9. [PubMed] [Google Scholar]
34.
Печенино А.С., Браун Т.Р. Супероксиддисмутаза в долях предстательной железы стареющих крыс Brown Norway. Предстательная железа. 2006; 66: 522–35. doi: 10.1002/pros.20364. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
35. Wesson DE, Elliott SJ. Фермент, генерирующий h3O2, ксантиноксидаза, уменьшает просветное содержание Ca 2+ в чувствительном к IP3 запасе Ca 2+ в эндотелиальных клетках сосудов. Микроциркуляция. 1995; 2: 195–203. doi: 10.3109/10739689509146767. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
36. Schallreuter KU, Gibbons NC, Zothner C, Abou Elloof MM, Wood JM. Окислительный стресс, опосредованный перекисью водорода, нарушает связывание кальция с кальмодулином: еще одно доказательство окислительного стресса при витилиго. Биохим. Биофиз. Рез. коммун. 2007; 360:70–75. doi: 10.1016/j.bbrc.2007.05.218. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
37. Takahashi T, et al. Плохое развитие эмбриона в ооцитах мыши в возрасте in vitro связано с нарушением гомеостаза кальция.
биол. Воспр. 2009 г.;80:493–502. doi: 10.1095/biolreprod.108.072017. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
38. Xu Z, Abbott A, Kopf GS, Schultz RM, Ducibella T. Спонтанная активация овулировавших яиц мыши: зависящие от времени эффекты на выходе М-фазы, экзоцитоз кортикальных гранул, рекрутирование материнской рибонуклеиновой кислоты и чувствительность к инозитол-1,4,5-трифосфату. биол. Воспр. 1997; 57: 743–750. doi: 10.1095/biolreprod57.4.743. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
39. Ma W, et al. Снижение экспрессии MAD2, BCL2 и активности киназы MAP в ооцитах свиньи через 9 лет.0009 старение in vitro связано с дефектами сегрегации сестринских хроматид во время мейоза II и фрагментацией эмбриона после активации. биол. Воспр. 2005; 72: 373–383. doi: 10.1095/biolreprod.104.030999. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
40. Карневали О., Москони Г., Кардинали М., Мейри И., Ползонетти-Магни А. Молекулярные компоненты, связанные с жизнеспособностью яиц дорады, Sparus aurata.
Мол. Воспр. Дев. 2001;58(3):330–5. doi: 10.1002/1098-2795(200103)58:3<330::AID-MRD11>3.0.CO;2-7. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
41. Raz E. Функция и регуляция vasa-подобных генов в развитии половых клеток. Геном биол. 2000;1(3): обзоры1017. doi: 10.1186/gb-2000-1-3-reviews1017. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
42. Николич А., Воларевич В., Армстронг Л., Лако М. и Стойкович М. Первичные зародышевые клетки: современные знания и перспективы. Стволовые клетки, международный . 1741072 (2016). [Бесплатная статья PMC] [PubMed]
43. Tzung KW, et al. Раннее истощение первичных зародышевых клеток у рыбок данио способствует формированию семенников. Отчеты о стволовых клетках. 2015;4(1):61–73. doi: 10.1016/j.stemcr.2014.10.011. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
44. Liu W, et al. Полное истощение первичных зародышевых клеток у рыб, состоящих исключительно из самок, приводит к изменению экспрессии генов, обусловленному полом, и появлению бесплодных самцов.
Геномика BMC. 2015;16:971. doi: 10.1186/s12864-015-2130-z. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
45. Houseweart MK, et al. Катепсин B, но не катепсины L или S, вносит вклад в патогенез прогрессирующей миоклонусной эпилепсии Унверрихта-Лундборга (EPM1) J. Neurobiol. 2003;56(4):315–327. doi: 10.1002/neu.10253. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
46. Kågedal K, Johansson U, Öllinger K. Лизосомальная протеаза катепсин D опосредует апоптоз, вызванный окислительным стрессом. FASEB J. 2001; 15: 1592–1594. doi: 10.1096/fj.00-0708fje. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
47. Самарин А.М. и соавт. Изменение содержания мРНК, продуктов окисления и активности антиоксидантных ферментов в процессе старения ооцитов карпа Cyprinus carpio. ПЛОС Один. 2019;14(2):e0212694. doi: 10.1371/journal.pone.0212694. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
48. Abe K, Inoue A, Suzuki MG, Aoki F. Глобальное замалчивание генов вызвано диссоциацией РНК-полимеразы II от ДНК в ооцитах мыши.
Дж. Репрод. Дев. 2010; 56: 502–507. doi: 10.1262/jrd.10-068A. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
49. Clarke HJ. Посттранскрипционный контроль экспрессии генов во время оогенеза у мышей. Полученные результаты. Пробл. Клетка. Отличаться. 2012; 55:1–21. doi: 10.1007/978-3-642-30406-4_1. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
50. Weill L, Belloc E, Bava FA, Mendez R. Контроль трансляции путем изменения длины поли(A)-хвоста: рециркуляция мРНК. Нац. Структура Мол. биол. 2012;19: 577–585. doi: 10.1038/nsmb.2311. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
51. Dankert D, et al. Пре- и постовуляторное старение мышиных ооцитов влияет на уровень транскрипта и длину поли(А) хвоста генов материнского эффекта. ПЛОС Один. 2014;9:e108907. doi: 10.1371/journal.pone.0108907. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
52. Wilson VL, Jones PA. Метилирование ДНК уменьшается при старении, но не в бессмертных клетках. Наука. 1983; 220:1055–1057. doi: 10.1126/science.
6844925. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
53. Crary-Dooley FK, et al. Сравнение существующих глобальных анализов метилирования ДНК с бисульфитным секвенированием всего генома с низким охватом для эпидемиологических исследований. Эпигенетика. 2017;12:206–214. doi: 10.1080/15592294.2016.1276680. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
54. McCauley BS, Dang W. Метилирование гистонов и старение: уроки, извлеченные из модельных систем. Биохим. Биофиз. Акта. 2014; 1839(12):1454–62. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
55. Сюй Ю., Чжан Дж.Дж., Грифо Дж.А., Крей Л.С. Паттерны метилирования ДНК в трехпронуклеарных зиготах человека. Мол. Гум. Воспр. 2004; 11: 167–171. doi: 10.1093/моль·ч/г·ч245. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
56. Ge ZJ, Schatten H, Zhang CL, Sun QY. Старение ооцитов и эпигенетика. Репродукция. 2015;149:R103–R114. doi: 10.1530/REP-14-0242. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
57.
Кьорсвик Э., Мангор-Йенсен А., Холмефьорд И. Качество икры у рыб. Доп. Мар. кипячение. 1990;26:71–113. doi: 10.1016/S0065-2881(08)60199-6. [CrossRef] [Google Scholar]
58. Brooks S, Tyler CR, Sumpter JP. Качество яиц у рыбы: что делает яйцо хорошим? Преподобный Рыба. биол. Фишер. 1997; 7: 387–416. doi: 10.1023/A:1018400130692. [CrossRef] [Google Scholar]
59. Flanagan JM, et al. Внутри- и межиндивидуальная эпигенетическая изменчивость половых клеток человека. Являюсь. Дж. Хам. Жене. 2006; 79: 67–84. дои: 10.1086/504729. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
60. Голдберг А.Д., Аллис К.Д., Бернштейн Э. Эпигенетика: ландшафт обретает форму. Клетка. 2007; 128: 635–638. doi: 10.1016/j.cell.2007.02.006. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]
61. Йениш Р., Бёрд А. Эпигенетическая регуляция экспрессии генов: как геном интегрирует внутренние сигналы и сигналы окружающей среды. Нац. Жене. 2003; 33: 245–254. doi: 10.1038/ng1089. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
62.
Fauvel C, Suquet M, Cosson J. Оценка качества спермы рыб. Дж. Заявл. Ихтиол. 2010; 26: 636–643. doi: 10.1111/j.1439-0426.2010.01529.x. [CrossRef] [Google Scholar]
63. Корессаар Т., Ремм М. Усовершенствования и модификации программы проектирования грунтовки Primer3. Биоинформатика. 2007;23(10):1289–1291. doi: 10.1093/биоинформатика/btm091. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
64. Untergasser A, et al. Primer3 – новые возможности и интерфейсы. Нуклеиновые Кислоты Res. 2012;40(15):e115. doi: 10.1093/nar/gks596. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
65. Smith PK, et al. Измерение белка с использованием бицинхониновой кислоты. Анальный. Биохим. 1985; 150:76–85. doi: 10.1016/0003-2697(85)90442-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
66. Claiborne, A. Активность каталазы. В Гринволле, Р.А. (ред.), Справочник CRC по методам исследования радикалов кислорода (стр. 283–284). Бока-Ратон, Флорида: CRC Press (1985).
67. Нисикими М.
, Рао Н.А., Яги К. Возникновение супероксид-аниона в реакции восстановленного феназинметосульфата и молекулярного кислорода. Биохим. Биофиз. Рез. коммун. 1972; 46: 849–854. doi: 10.1016/S0006-291X(72)80218-3. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
68. Мохандас Дж., Маршалл Дж.Дж., Даггин Г.Г., Хорват Дж.С., Тиллер Д.Дж. Дифференциальное распределение глутатиона и связанных с глутатионом ферментов в почках кролика – возможные последствия анальгетической нефропатии. Биохим. Фармакол. 1984;33:1801–1807. doi: 10.1016/0006-2952(84)90353-8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
69. Cribb AE, Leeder JS, Spielberg SP. Использование устройства для чтения микропланшетов в анализе глутатионредуктазы с использованием 5,5′-дитиобис (2-нитробензойной кислоты) Anal. Биохим. 1989; 183: 195–196. doi: 10.1016/0003-2697(89)
-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
70. Li P, et al. Оценка воздействия осмотического и окислительного стресса на сперму карпа (Cyprinus carpio L.), вызванного методами криоконсервации.
биол. Воспр. 2010; 83: 852–858. дои: 10.1095/биолрепрод.110.085852. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Благоприятное для рыб лето на Rogue – новости Медфорда, погода, спорт, экстренные новости
Рыбобиологи думали, что это лето может оказаться смертельным для лосося-бродяги, но их опасения развеялись. с водой
Брэндон Хиатт, гид-рыболов из Кламат-Фолс, чистит весеннюю чавычу на государственной базе отдыха Тувелль в июле. [Jamie Lusch / Mail Tribune]
Несмотря на то, что в последнее время дюжина трехзначных дней могла вызвать смертельные заболевания рыб, этим летом миграция лосося из реки Роуг прошла довольно плавно благодаря большому количеству запасенной воды в водохранилище.
Попуски воды из озера Лост-Крик поддержали потоки Бродяги настолько, что смыли опасения биологов, что весенняя чавыча на пути к верховьям Бродяги погибнет от болезней, переносимых теплой водой.
Благоприятные рыбные условия привели к лучшей весенней миграции чавычи в инкубаторий Cole Rivers в Trail с 2017 года.
И это несмотря на дюжину дней температуры воздуха в Медфорде 100 градусов или выше, по данным Национальной службы погоды.
«Без дополнительной (запасной) воды, которую мы в итоге получили, у нас была бы мертвая рыба», — сказал Пит Самарин, биолог из Департамента рыбных ресурсов и дикой природы штата Орегон, который помогает разрабатывать планы выпуска воды в бассейне Роуг.
«Для меня это довольно удивительно», — сказал Самарин.
Следующее большое испытание начнется на следующей неделе, когда агентства пересмотрят планы выпуска воды для следующей волны бродячего лосося — осенней чавычи.
По распоряжению ODFW Инженерный корпус армии США начнет увеличивать попуски воды из озера Лост-Крик на 20%, чтобы помочь осенней чавыче разбойника жить так же, как и весенней чавыче.
Выпуски должны были начаться в четверг, но Самарин отменил их.
Более низкие температуры воздуха и данные исследований рыболовных сетей ODFW в нижней части залива Роуг показывают, что чавыча еще не покидала прохладные пределы залива Разбойник, поэтому Самарин вернется к запланированным выпускам в начале следующей недели.
Всего лишь пятидневная задержка вздутых потоков вселяет Самарину уверенность в том, что «Разбойник» снова обойдёт гибель лосося.
— Мы не занимаемся тратой воды, — сказал Самарин. «Подождем до понедельника».
Когда в марте уровень воды в водохранилище был опасно низким, биологи ожидали, что в этом году от трети до половины диких чавыч погибнет от тепловодных болезней.
Но влажный источник заполнил Лост-Крик и родственное ему водохранилище, озеро Эпплгейт, и позволил биологам разработать схемы неконтролируемого стока для предотвращения вспышек болезней, которых здесь не наблюдалось более двух десятилетий.
Биологи связали температуру окружающего воздуха с потеплением вод Разбойников в районе Агнесса, где весной и осенью чавычам приходится перемещаться по нижнему каньону Разбойников, чтобы добраться до более прохладных пределов верхнего Разбойника.
Жаркая погода может поднять температуру воды до такой степени, что это вызовет вспышки естественных болезней, таких как столбняк, который поражает жабры чавычи и может задушить их в массовом порядке.
Этой весной казалось, что первая вспышка колумбариса с 2001 года неизбежна.
— Мы ожидали дохлую рыбу в июле и еще дохлую рыбу на следующей неделе, — сказал Самарин.
Но по дороге на вечеринку жалости к воде этим летом произошел забавный случай.
Весенний дождь и почти рекордный снегопад на озере Крейтер привели к тому, что озеро Лост-Крик почти наполнилось, а прогнозы оттока поднялись намного выше среднего, почти гарантируя более безопасное лето на реке для лосося и людей.
Лучшим средством защиты от болезней является искусственное повышение летнего стока, что снижает температуру. И в этом году это потребовало некоторой работы.
С 25 июня Национальная служба погоды в Медфорде зарегистрировала 12 дней погоды с трехзначным числом, в том числе шесть подряд с 24 по 29 июля, сообщил метеоролог Марк Спилде.
Пик жары пришелся на 29 июля, когда в Медфорде термометр поднялся до 114 градусов, сказал Спилде.
Хотя невозможно с уверенностью предсказать температуру здесь в конце этого месяца, есть вероятность, что жители Долины Разбойников, включая ее дикого лосося, пережили худший год.
